doc_act

МУ 4.2.2123-06 Контроль сыворотки крови крупного рогатого скота на присутствие посторонних вирусов и микоплазм

Реклама

  Скачать документ



4.2. МЕТОДЫ КОНТРОЛЯ. БИОЛОГИЧЕСКИЕ
И МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ ФАКТОРЫ

Контроль сыворотки крови
крупного рогатого скота на присутствие
посторонних вирусов и микоплазм

Методические указания

МУК 4.2.2123-06



Реклама

1. Разработаны: ФГУН «Государственный научно-исследовательский институт стандартизации и контроля медицинских биологических препаратов им. Л.А. Тарасевича» Роспотребнадзора (Н.В. Шалунова, З.Е. Бердникова, Е.М. Петручук).

2. Рекомендованы к утверждению Комиссией по государственному санитарно-эпидемиологическому нормированию Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (протокол № 2 от 11.07.06).

3. Утверждены и введены в действие Руководителем Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, Главным государственным санитарным врачом Российской Федерации Г.Г. Онищенко 17 августа 2006 г.

4. Введены взамен: РД 42-28-14-88 «Контроль сыворотки крови крупного рогатого скота на отсутствие вирусов-контаминантов и микоплазм».

УТВЕРЖДАЮ



Реклама

Руководитель Федеральной службы

по надзору в сфере защиты прав

потребителей и благополучия человека,

Главный государственный санитарный

врач Российской Федерации



Реклама

Г.Г. Онищенко

17 августа 2006 г.

Дата введения: с момента утверждения

4.2. МЕТОДЫ КОНТРОЛЯ. БИОЛОГИЧЕСКИЕ И МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ ФАКТОРЫ

Контроль сыворотки крови крупного рогатого скота на присутствие посторонних вирусов и микоплазм



Реклама

Методические указания

МУК 4.2.2123-06

1. Область применения

1.1. Методические указания устанавливают методы контроля коммерческой сыворотки крови крупного рогатого скота (далее - сыворотка) на присутствие посторонних вирусов и микоплазм. Сыворотка широко применяется при культивировании органов и тканей животных, используемых для приготовления профилактических и диагностических иммунобиологических препаратов и в научных исследованиях. Сыворотка является одним из компонентов питательных сред, используемых для культивирования первичных и перевиваемых клеточных культур.

1.2. Методические указания предназначены для специалистов органов и учреждений Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, выпускающих и контролирующих медицинские иммунобиологические профилактические препараты.



Реклама

1.3. Методические указания также могут использоваться организациями, зарегистрированными в Российской Федерации, выпускающими и контролирующими медицинские иммунобиологические профилактические препараты, и специалистами научных лабораторий.

2. Общие положения

Контроль сыворотки на присутствие посторонних вирусов предусматривает использование первично-трипсинизированных и перевиваемых клеточных культур, являющихся высокочувствительными и доступными для выявления наиболее часто встречающихся вирусов-контаминантов. В этих культурах хорошо размножаются с развитием цитопатических изменений вирусы парагриппа, инфекционного ринотрахеита, диареи и аденовирусы. Продолжительность контроля 28 сут.

Контроль сыворотки на присутствие микоплазм предусматривает проведение двух методов:

1. Микробиологический метод. Метод основан на выявлении роста микоплазм при внесении испытуемой сыворотки в питательные среды. Продолжительность контроля 21 сут.



Реклама

2. Метод индикаторной клеточной культуры (цитохимический метод).

Метод основан на выявлении ДНК микоплазм, окрашенных флюорохромом Hoechst - 33258 на индикаторной клеточной культуре Vero.

Продолжительность контроля 3 - 5 сут.

3. Средства измерений, вспомогательные устройства, оборудование, реактивы и материалы

3.1. При выполнении контроля должны быть применены следующие средства измерений, оборудование и вспомогательные устройства:



Реклама

весы аптечные от 1 до 20 г, погрешность

± 20 мг ТУ 64-1-2834-80

колбы стеклянные, конические,

вместимостью 50 мл, 100 мл ГОСТ 25336-82Е

стакан химический вместимостью 1000 мл ГОСТ 25336-82Е



Реклама

пипетки градуированные от 1,0 до 10,0 мл ГОСТ 29227-91

пробирки бактериологические

вместимостью от 10,0 до 20,0 мл ГОСТ 25336-82Е

стакан химический, вместимостью

1000 мл ГОСТ 25336-82Е

флаконы для культивирования из

нейтрального стекла (матрасы) ГОСТ 5636-70

флаконы, вместимостью 100, 500 мл МРТУ 5031-32

мешалка магнитная МРТУ 64-1-1503-67

микроскоп биологический (любой модели)

микроскоп люминесцентный серии ЛЮМАМ

ножницы медицинские ГОСТ 21239-93

пинцеты анатомические ТУ 64-1-37-78

пробки резиновые ТУ 38.006269-95

стекла предметные ТУ 9464-001-33016370-95

чашки Петри (однократного применения) ТУ 64-2-19-79

воронка стеклянная ГОСТ 25336-82Е

камера Горяева ТУ 9443-001-11856833-94

термостат на температуру 37 °С с погрешностью

измерения не более ±1 °С

холодильник с температурой от 4 до 10 °С

вместимостью 1000 мл

холодильник с температурой минус (20 ± 4) °С

центрифуга ЦЛС-3 МРТУ 42.1778-65 (495)

3.2. При выполнении контроля должны быть применены следующие реактивы и материалы:

бензилпенициллина натриевая соль ФСП 42-0048-1083-01

стрептомицина сульфат ФС 42-3726-99

версена раствор ФСП 42-0196-3274-02

вода дистиллированная ГОСТ 6709-72

гидролизат сердца крупного рогатого скота

дрожжи хлебопекарные прессованные ГОСТ 171-81

глицерин, чда ГОСТ 6259-75

масло иммерсионное кедровое (чистое) ТУ 81-05-79-75

мясная вода ТУ 42.14.271-82

натрия гидроокись ГОСТ 4228-77

натрия хлорид ГОСТ 4233-77

раствор Хенкса ФСП 42-0343-3541-02

спирт этиловый ректификованный 96° ГОСТ 18300-87

питательная среда ДМЕМ ФСП 42-0343-3544-02

сыворотка крови крупного рогатого скота,

жидкая для культур клеток

(предварительно отконтролированная на

присутствие посторонних вирусов и микоплазм) ФСП 42-0196-4672-03

тестикулы эмбрионов быка (получают на

мясокомбинате, срок хранения не более 1 сут.

при температуре от 4 до 10 °С)

трипсин (0,25 %-й раствор) ФСП 42-0343-3805-03

хлороформ ГОСТ 20015-88

бумага фильтровальная ГОСТ 12026-761

вата медицинская гигроскопическая ТУ 8195-01116673801-99

марля медицинская ГОСТ 9412-93,

ТУ 9390-0119-34576906-95.

4. Требования безопасности

Работу с микроорганизмами 3 и 4 групп проводят в соответствии с СП 1.2.731-99 «Безопасность работы с микроорганизмами III - IV групп патогенности и гельминтами».

5. Условия проведения контроля

Подготовительные операции и испытания на присутствие посторонних вирусов и микоплазм проводят в чистых помещениях класса А/В (GMP) с ламинарным потоком воздуха при соблюдении правил асептики, при температуре (20 ± 2) °С и относительной влажности 60 - 70 %.

6. Контроль сыворотки на присутствие посторонних вирусов

При выполнении контроля используют два вида клеточных культур: первично-трипсинизированные-тестикулы эмбрионов быка (ТБ) 4 - 6-месячного возраста и перевиваемые - почки быка (МДВК) или любые другие перевиваемые клеточные культуры почки крупного рогатого скота, в которые вносят исследуемые сыворотки. Принцип метода основан на появлении цитопатического действия (ЦПД) или гемадсорбции под действием вирусов-контаминантов.

6.1. Подготовка к выполнению контроля

При подготовке к выполнению контроля сыворотки на присутствие посторонних вирусов должны быть выполнены следующие операции:

6.1.1. Приготовление первично-трипсинизированной клеточной культуры тестикулов эмбрионов быка (ТБ).

6.1.2. Доставляют тестикулы эмбрионов быков 4 - 6-месячного возраста с перевязанной мошонкой с мясокомбината в любом стерильном сосуде с 250 - 270 мл раствора Хенкса с 500 ед/мл бензилпенициллина калиевой или натриевой соли.

6.1.3. Обжигают кожу мошонки над пламенем горелки и обрабатывают тампоном со спиртом.

6.1.4. Срезают ножницами кожу с кончика мошонки и, подтягивая тестикулы за семенные канатики, извлекают их.

6.1.5. Помещают тестикулы в стерильную чашку Петри и удаляют ножницами белочную оболочку.

6.1.6. Переносят тестикулы в чашку Петри с 30 - 35 мл раствора Хенкса с 100 ед/мл антибиотика.

6.1.7. Разрезают тестикулы вдоль и вылущивают ножницами содержимое в раствор Хенкса.

6.1.8. Промывают ткань тестикулов до просветления жидкости 2 - 3 раза в растворе Хенкса с 500 ед/мл антибиотика.

6.1.9. Помещают ткань тестикулов в колбу вместимостью 500 мл с перемешивающим стержнем, прилагаемым к магнитной мешалке.

6.1.10. Нагревают 0,2 %-й раствор трипсина до температуры (20 ± 2) °С и наливают 100 - 150 мл в колбу. Колбу ставят на магнитную мешалку и включают ее. Скорость вращения перемешивающего стержня должна быть такой, чтобы жидкость не пенилась и стержень не ударялся о стенки колбы.

Перемешивание проводят 5 - 6 мин.

6.1.11. Сливают надосадочную жидкость после первого цикла трипсинизации в колбу для отходов.

6.1.12. Проводят 4 - 5 циклов трипсинизации.

6.1.13. Сливают надосадочную жидкость после каждого цикла во флаконы вместимостью 100 мл.

6.1.14. Помещают флаконы в центрифугу и осаждают клетки при скорости 1000 - 1500 об/мин в течение 10 - 15 мин.

6.1.15. Вынимают флаконы из центрифуги, сливают надосадочную жидкость в сосуд для отходов.

6.1.16. Добавляют в каждый флакон к осадку клеток по 10 - 15 мл среды 0,5 %-го гидролизата лактальбумина на растворе Хенкса.

6.1.17. Объединяют полученные суспензии клеток в один флакон и отбирают пипеткой (0,5 ± 0,01) мл.

6.1.18. Добавляют к 0,5 мл этой суспензии 0,5 мл 0,1 %-го раствора метиленового синего и подсчитывают окрашенные клетки в камере Горяева при увеличении 70?. Для точности результатов подсчет проводят в нескольких пробах. Количество клеток в 1 мл подсчитывают по формуле:

X - концентрация клеток в 1 мл исходной суспензии;

а - среднее число клеток в нескольких пробах;

0,9 - объем камеры Горяева в мм3;

1000 - число мм3 в 1 см3;

2 - коэффициент разведения суспензии добавленным объемом краски.

6.1.19. Разводят суспензию клеток средой ДМЕМ во флаконе по п. 6.1.17 с таким расчетом, чтобы в 1 мл содержалось 4 - 5 ? 105 клеток/мл.

6.1.20. Вносят в каждый из 2 флаконов вместимостью 1000 мл по 100 - 120 мл разведенной суспензии клеток и добавляют 10 % сыворотки, предварительно отконтролированной на присутствие посторонних вирусов и микоплазм.

6.2. Культивирование и подготовка перевиваемой клеточной культуры почки быка (МДВК)

6.2.1. Готовят во флаконе вместимостью 100 мл 50 мл смеси, состоящей из равных объемов 0,02 %-го раствора версена и 0,25 %-го раствора трипсина и нагревают ее до температуры (20 ± 2) °С.

6.2.2. Просматривают флаконы с МДВК вместимостью 1000 мл под микроскопом при увеличении 70? и отбирают с полным монослоем клеток.

6.2.3. Сливают питательную среду из флаконов в сосуд для отходов и добавляют смесь версена и трипсина.

6.2.4. Оставляют клетки в смеси версена и трипсина при температуре (20 ± 2) °С и наблюдают за ними визуально.

6.2.5. Когда начнется «набухание» и слабое «отслоение» клеток от стекла (обычно через 15 - 20 мин), сливают смесь версена и трипсина в сосуд для отходов.

6.2.6. Флаконы с клеточной культурой помещают при температуре (37 ± 1) °С на 30 - 35 мин.

6.2.7. Добавляют во флаконы по 50 мл среды ДМЕМ и встряхивают их так, чтобы все клетки отделились от стекла.

6.2.8. Подсчитывают клетки в камере Горяева, как указано в п. 5.1.18.

6.2.9. Разводят клетки средой ДМЕМ с таким расчетом, чтобы в 1 мл содержалось 2 ? 105 клеток/мл.

6.2.10. Вносят в каждый из 2 флаконов по 100 - 120 мл разведенной суспензии клеток и добавляют 10 % сыворотки, предварительно отконтролированной на присутствие посторонних вирусов и микоплазм.

6.2.11. Через 5 - 6 сут. просматривают флаконы под световым микроскопом и отбирают с полным монослоем клеток.

6.3. Выполнение контроля сыворотки на присутствие посторонних вирусов

При выполнении контроля сыворотки на присутствие посторонних вирусов должны быть выполнены следующие операции:

6.3.1. Отбирают по 1 флакону с клеточными культурами ТБ и МДВК для проверки испытуемой сыворотки и по 1 флакону с теми же культурами в качестве контрольных.

6.3.2. Сливают питательную среду из флаконов в сосуд для отходов.

6.3.3. Монослой клеток ТБ и МДВК промывают 3 раза средой ДМЕМ без сыворотки.

6.3.4. Вносят пипеткой в каждый из двух флаконов вместимостью 1000 мл с клеточными культурами ТБ и МДВК по 25 мл испытуемой сыворотки так, чтобы разведение в среде не превышало 1 : 4 из расчета не менее 3 см2 площади на 1 мл сыворотки.

Одновременно вносят пипеткой в каждый из двух контрольных флаконов вместимостью 1000 мл с клеточными культурами ТБ и МДВК по 25 мл сыворотки, ранее отконтролированной на присутствие посторонних вирусов и микоплазм.

6.3.5. Инкубируют клеточные культуры ТБ и МДВК при температуре (20 ± 2) °С (60 ? 5) мин.

6.3.6. Сливают сыворотку и добавляют в опытные и контрольные флаконы с культурами ТБ и МДВК по 75 мл среды ДМЕМ.

Инкубируют при температуре (37 ± 1) °С 14 сут.

6.3.7. С целью обнаружения цитопатогенного действия (ЦПД) просматривают опытные и контрольные клеточные культуры под микроскопом на 2, 5, 7, 10 и 14 сут.

6.3.8. Если в опытных и контрольных клеточных культурах не будет наблюдаться ЦПД, через 14 сут. их трижды замораживают при температуре минус (20 ± 2) °С и размораживают при температуре (37 ± 2) °С.

6.3.9. После размораживания культуры флаконы встряхивают, отбирают из каждого флакона с клеточными культурами ТБ и МДВК по 25 мл суспензии и вносят во флаконы с клетками того же вида. Два флакона с клеточными культурами ТБ и МДВК оставляют для контроля.

6.3.10. Вносят в опытные и контрольные клеточные культуры ТБ и МДВК по 75 мл среды ДМЕМ.

6.3.11. Клеточные культуры инкубируют при температуре (37 ± 2) °С в течение 14 сут.

Если в течение 14 сут. в опытных и контрольных клеточных культурах не наблюдается ЦПД, их проверяют на наличие гемадсорбирующих вирусов.

6.3.12. Сливают из флаконов питательную среду и промывают культуры 3 раза раствором Хенкса.

6.3.13. Добавляют в опытные и контрольные клеточные культуры по 50 мл 0,25 %-й взвеси куриных эритроцитов и эритроцитов морской свинки и инкубируют их при температуре (37 ± 2) °С.

6.3.14. Через 30 - 35 мин эритроциты из флаконов удаляют, а монослой промывают раствором Хенкса и просматривают под микроскопом при увеличении 70х.

6.4. Учет результатов

6.4.1. Если в клеточных культурах при первичной инокуляции сыворотки и в пассаже не выявлено ЦПД и не отмечено гемадсорбции, сыворотка признается пригодной.

6.4.2. Если при исследовании наблюдается ЦПД или отмечается гемадсорбция в испытуемых клеточных культурах при отсутствии в контроле, сыворотку бракуют.

6.4.3. Если ЦПД или гемадсорбция появились в контрольных и в опытных клеточных культурах, допускается однократный переконтроль сыворотки.

7. Контроль сыворотки на присутствие микоплазм

7.1. Микробиологический метод контроля сыворотки на присутствие микоплазм

Обнаружение микоплазм микробиологическим методом предусматривает внесение исследуемой сыворотки в бульонную питательную среду, инкубирование в течение 7 сут. и последующий высев на питательную среду, содержащую 0,3 % агара.

7.2. Чувствительность микробиологического метода

Микробиологический метод контроля сыворотки позволяет обнаруживать одну и более колоний микоплазм в объеме не более 100 мл сыворотки.

7.3. Приготовление бульонной среды

7.3.1. Для приготовления 1 л среды к 200 мл триптического гидролизата бычьего сердца (содержание сухих веществ 8 - 10 %) добавляют 400 мл мясного экстракта 1 : 2 (содержание сухих веществ 3,0 - 3,5 %), экстракт хлебопекарных дрожжей из расчета 1,5 г сухих веществ на 1 л среды, и 5,0 г хлорида натрия.

7.3.2. С помощью 10 %-го раствора NaOH устанавливают значение рН бульонной среды от 8,0 до 8,2.

7.3.3. Среду нагревают до кипения, кипятят 2 - 3 мин, фильтруют через складчатый бумажный фильтр.

7.3.4. Разливают по 300 - 305 мл во флаконы, закрытые ватно-марлевыми или резиновыми пробками и завальцованные алюминиевыми колпачками, и стерилизуют автоклавированием при температуре 110 °С 30 мин. С помощью 5 %-го раствора соляной кислоты устанавливают рН от 7,8 до 8,0.

7.3.5. Для приготовления среды, содержащей 0,3 % агара, дополнительно вносят 3,0 г агара.

Готовые среды хранят при температуре от 2 до 8 °С не более 4 мес.

7.4. Стерильность питательной среды

7.4.1. Для испытания на стерильность отбирают не менее 2 % от количества емкостей в серии. Определение проводят путем визуального просмотра каждого флакона с питательной средой после выдерживания в течение 44 - 48 ч при температуре (37 ± 1) °С и 14 сут. при температуре 20 - 25 °С.

7.4.2. В случае пророста хотя бы в одном флаконе бракуют всю серию. Далее питательная среда не используется.

7.5. Определение ростовых свойств среды, содержащей 0,3 % агара

Каждую серию приготовленной среды проверяют на ростовые свойства, используя тест-штамм Mycoplasma arginini G 230 (ОСО 42-28-378-05).

Среду считают чувствительной и признают годной, если результаты ее испытания соответствуют Инструкции по применению ОСО 42-28-378-05.

7.6. Подготовка сред для контроля

7.6.1. Перед употреблением полужидкую среду, содержащую 0,3 % агара, разогревают в водяной бане до полного расплавления агара и охлаждают до температуры 40 - 45 °С.

7.6.2. Добавляют 15 - 20 % нормальной сыворотки крови лошади без консерванта, предварительно проверенной на стерильность и присутствие микоплазм, и 100 ед/мл бензилпенициллина натриевой соли.

7.6.3. Разливают по 10 мл в бактериологические пробирки и закрывают ватно-марлевыми пробками. Хранят среду при температуре от 2 до 8 °С не более 7 сут.

7.7. Выполнение контроля сыворотки на присутствие микоплазм микробиологическим методом

При выполнении контроля сыворотки микробиологическим методом должны быть выполнены следующие операции:

7.7.1. Вносят (300 ± 2) мл бульонной среды во флакон вместимостью 500 мл. Флакон закрывают ватно-марлевой пробкой.

7.7.2. Вносят (100 ± 2) мл исследуемой сыворотки в (300 ± 2) мл бульонной среды. Смесь инкубируют 7 сут при температуре (37 ± 1) °С и относительной влажности 80 - 90 %.

7.7.3. Отбирают 10 пробирок со средой, содержащей 0,3 % агара, и вносят в каждую пробирку по (1,0 ± 0,1) мл смеси исследуемой сыворотки и бульонной среды. Посев проводят прокалыванием всего столбика питательной среды, содержащейся в пробирке, концом пипетки вместимостью 1,0 мл, выпуская равномерно ее содержимое, начиная от дна до поверхности.

7.7.4. Инкубируют посевы 14 сут. при температуре (37 ± 1) °С и относительной влажности 80 - 90 %.

7.8. Учет результатов

7.8.1. Учет результатов проводят путем визуального просмотра засеянных пробирок в проходящем свете на 4, 7, 10, 14 сут.

7.8.2. Сыворотка считается свободной от микоплазм, если через 14 сут. не обнаруживают роста микоплазм ни в одной из засеянных пробирок.

7.8.3. В случае получения сомнительных результатов проводят повторный контроль.

7.8.4. При повторном контроле, при наличии роста микоплазм хотя бы в одной пробирке, сыворотка считается контаминированной микоплазмами.

8. Контроль сыворотки на присутствие микоплазм методом индикаторной клеточной культуры (цитохимический метод)

Метод обнаружения микоплазм с использованием индикаторной клеточной культуры Vero основан на внесении испытуемой сыворотки в клеточную культуру и обработку препарата специфическим флюоресцирующим красителем Hoechst-33258, окрашивающим ДНК клеток и микоплазм. Возможно применение другого флюорохрома, аттестованного в ГИСК им. Л. А. Тарасевича. Клеточную культуру Vero (или другую чувствительную к микоплазмам) получают из банка клеток, аттестованного в соответствии с требованиями ВОЗ в ГИСК им. Л.А. Тарасевича.

8.1. Подготовка к выполнению контроля на присутствие микоплазм методом индикаторной клеточной культуры

При подготовке к выполнению контроля сыворотки на присутствие микоплазм методом индикаторной клеточной культуры должны быть выполнены следующие операции: приготовление основного и рабочего раствора красителя Hoechst-33258, подготовка люминесцентного микроскопа, подготовка предметных стекол.

8.1.1. Приготовление основного и рабочего раствора Hoechst-33258

Соблюдая стерильность, 5 мг концентрата Hoechst-33258 растворяют в 100 мл стерильной дистиллированной воды (основной раствор).

Для получения рабочего раствора добавляют концентрат красителя в раствор Хенкса без индикатора в соотношении 1:9 и используют для окраски препаратов немедленно.

8.1.2. Подготовка люминесцентного микроскопа

Используют для анализа препаратов фильтры: ФС1-4, СС15-2, БС8-2. Просматривают препараты при увеличении ок. 10?, об. 90? масляная иммерсия, или об. 70? или об. 85? водная иммерсия.

8.1.3. Подготовка предметных стекол

Промывают стекла в проточной водопроводной воде в течение 10 - 15 мин. Помещают стекла в сосуд с дистиллированной водой и кипятят 5 - 7 мин. После охлаждения до температуры 20 - 22 °С извлекают стекла с помощью пинцета и помещают в чашку Петри. Протирают каждое стекло стерильной салфеткой и помещают на 1 сут. в смесь Никифорова, состоящую из равных объемов 96° этилового спирта и эфира для наркоза. Извлекают стекла с помощью пинцета из смеси Никифорова и протирают каждое стекло стерильной салфеткой. Стерилизуют стекла (30 ? 2) мин при температуре (120 ± 2) °С.

8.2. Выполнение контроля сыворотки на присутствие микоплазм методом индикаторной клеточной культуры

При проведении испытания на присутствие микоплазм методом индикаторной клеточной культуры выполняют следующие операции:

8.2.1. Вносят 1 мл испытуемого материала в чашку Петри диаметром 90 мм, содержащую стерильное предметное стекло и 20 - 23 мл суспензии клеточной культуры Vero в концентрации 105 кл/мл.

8.2.2. Инкубируют чашку Петри с клеточной культурой Vera в течение 3 - 5 сут. при температуре (37 ± 1) °С в анаэробных условиях до формирования 50 - 70 % монослоя. Образование монослоя наблюдают в световом микроскопе при увеличении ок. 10?, об. 20?.

8.2.3. Сливают культуральную жидкость, промывают препарат питательной средой или буфером (рН 7,2 - 7,4).

8.2.4. Помещают предметное стекло на 30 - 35 мин в 96° этиловый спирт.

Сливают спирт и высушивают препарат на воздухе.

8.2.5. Добавляют рабочий раствор красителя Hoechst-33258 и окрашивают в темноте при температуре (37 ± 1) °С в течение 30 - 35 мин.

8.2.6. Сливают краситель, промывают препарат стерильной дистиллированной водой, подсушивают на воздухе и микроскопируют.

8.3. Учет результатов

Учет результатов испытания на присутствие микоплазм методом окрашивания ДНК флюорохромом Hoechst-33258 на индикаторной культуре клеток Vero проводят путем просмотра препаратов в люминесцентном микроскопе.

Микоплазмы выглядят, как однородно окрашенные тела сферической формы, имеющие вид отдельных, парных, цепочечных или нитевидных образований яркого зеленоватого свечения. Диаметр обычно находится в пределах 0,1 - 0,3 микрона.

Микоплазмы в виде ярко светящейся зернистости на фоне темной цитоплазмы выявляют по периферии клеток и в межклеточном пространстве.

Условно интенсивность контаминации микоплазмами обозначают знаками креста:

1 крест - единичные микоплазмы в препарате;

2 креста - небольшие скопления микоплазм в поле зрения;

3 креста - отдельные микоплазмы и скопления в 20 - 50 % клеток;

4 креста - максимальное количество микоплазм в виде скоплений в межклеточном пространстве в каждом поле зрения.

В качестве положительных контрольных образцов используют заведомо контаминированные микоплазмами клеточные культуры.

Отрицательными контрольными образцами служат клеточные культуры, в которых описанные выше светящиеся образования не выявлены.

Обнаружение микоплазм в препаратах на индикаторной клеточной культуре Vero свидетельствует о контаминации испытуемого материала микоплазмами.

В случае получения сомнительных результатов следует проводить повторный контроль.

Окончательный ответ о присутствии микоплазм в сыворотке будет учитывать результаты двух методов: микробиологического и метода индикаторной клеточной культуры.

В случае обнаружения микоплазм хотя бы одним методом сыворотка считается контаминированной и бракуется.

Приложение

Таблица 1

Контроль сыворотки крови крупного рогатого скота на присутствие посторонних вирусов

Клеточные культуры

Результаты контроля

ЦПД

Гемадсорбция

Первично-трипсинизированная клеточная культура ТБ

не обнаружено

не обнаружено

Перевиваемая клеточная культура МДВК

не обнаружено

не обнаружено

Таблица 2

Контроль сыворотки крови крупного рогатого скота на присутствие микоплазм

Методы

Результаты контроля

Микробиологический (посев на питательные среды)

Отсутствие роста

Цитохимический

Отсутствие люминесцентного свечения в индикаторной клеточной культуре Vero

СОДЕРЖАНИЕ

1. Область применения. 1

2. Общие положения. 2

3. Средства измерений, вспомогательные устройства, оборудование, реактивы и материалы.. 2

4. Требования безопасности. 3

5. Условия проведения контроля. 3

6. Контроль сыворотки на присутствие посторонних вирусов. 3

6.1. Подготовка к выполнению контроля. 4

6.2. Культивирование и подготовка перевиваемой клеточной культуры почки быка (МДВК) 5

6.3. Выполнение контроля сыворотки на присутствие посторонних вирусов. 5

6.4. Учет результатов. 6

7. Контроль сыворотки на присутствие микоплазм.. 6

7.1. Микробиологический метод контроля сыворотки на присутствие микоплазм.. 6

7.2. Чувствительность микробиологического метода. 6

7.3. Приготовление бульонной среды.. 6

7.4. Стерильность питательной среды.. 7

7.5. Определение ростовых свойств среды, содержащей 0,3 % агара. 7

7.6. Подготовка сред для контроля. 7

7.7. Выполнение контроля сыворотки на присутствие микоплазм микробиологическим методом.. 7

7.8. Учет результатов. 7

8. Контроль сыворотки на присутствие микоплазм методом индикаторной клеточной культуры (цитохимический метод) 8

8.1. Подготовка к выполнению контроля на присутствие микоплазм методом индикаторной клеточной культуры.. 8

8.2. Выполнение контроля сыворотки на присутствие микоплазм методом индикаторной клеточной культуры.. 8

8.3. Учет результатов. 9

Приложение. 9




Реклама: ;


Самые популярные документы раздела



Рейтинг@Mail.ru Яндекс.Метрика